Autentikasi dan Deteksi Adulterasi Pati Komersial Melalui Analisis Mikroskopik Granula
DOI:
https://doi.org/10.46772/jigk.v8i`1.2098Keywords:
adulterasi pangan, analisis mikroskopik, autentikasi pangan, granula pati, pati komersialAbstract
Autentikasi pangan merupakan langkah krusial dalam sistem jaminan mutu dan keamanan pangan untuk melindungi konsumen dari praktik kecurangan (food adulteration). Produk pati komersial memiliki kerentanan tinggi terhadap pemalsuan akibat disparitas nilai ekonomi serta potensi pemurnian yang tidak sempurna. Penelitian ini bertujuan untuk mengkarakterisasi morfologi granula dari lima jenis pati murni (jagung, garut, sagu, beras, dan singkong) serta mendeteksi keberadaan adulterasi/pengotor pada sampel komersial menggunakan teknik mikroskopi cahaya yang dikombinasikan dengan pewarnaan iodium (I₂/KI 0,01 N). Pengamatan dilakukan pada perbesaran 10× dan 40× dengan memindai minimal lima bidang pandang untuk menjamin keterwakilan data. Hasil pengamatan morfologi menunjukkan perbedaan spesifik berdasarkan asal botani: pati jagung dan beras dominan berbentuk poligonal, sedangkan pati garut, sagu, dan singkong cenderung berbentuk bulat hingga oval. Evaluasi kemurnian pada sampel komersial mengungkapkan keberadaan pengotor berupa debu dan serat tanaman dengan persentase bidang pandang tercampur sebesar 40% pada pati jagung, serta 100% pada pati garut dan sagu, sehingga ketiga sampel dikategorikan teradulterasi/palsu. Sebaliknya, sampel pati beras dan singkong komersial tidak menunjukkan adanya pengotor (0%) dan dikategorikan murni. Penelitian ini membuktikan bahwa analisis mikroskopik berbasis pewarnaan iodium merupakan metode skrining kualitatif yang cepat, handal, dan efisien untuk autentikasi dan pengendalian mutu produk berbasis pati.
References
1. Raharjo B, Rahayu WP, Hunaefi D. Relevansi budaya keamanan pangan dengan implementasi teknologi industri 4.0 di industri pangan Indonesia. Jurnal Teknologi dan Industri Pangan. 2023;34(2):152-65.
2. Müller-Maatsch J, van Ruth SM. Handheld devices for food authentication and their applications: A review. Foods. 2021;10(12):2901.
3. PATPI. Inovasi Teknologi Pangan Menuju Indonesia Emas. Jakarta: IPB Press; 2021.
4. Caixeta MA, Teixeira MG, Campos KA, Vilas Boas BM. Validation of a microscopic method and mathematical model for the detection of corn and wheat starch in adulterated ground black pepper. Revista Agrogeoambiental. 2026;18(1):e20262049.
5. Pratiwi EZD, Kurniawati AD. Spektroskopi Fourier Transform Infrared dengan kemometrika: Metode deteksi cepat untuk autentikasi dan keamanan pangan. Jurnal Ilmiah Teknologi Pertanian Agrotechno. 2025;10(2):8-16.
6. Dutta P, Chaurasia B. Microscopic characterization and analysis of Ayurvedic herbal products using light microscopy. International Journal of Ayurvedic Medicine. 2023;13(4):859-66.
7. Apriyanto A, Compart J, Fettke J, Singh J. A review of starch, a unique biopolymer: Structure, metabolism and in planta modifications. Food Hydrocolloids. 2022;132:107805.
8. Pesek S, Lehene M, Brânzanic AMV, Silaghi-Dumitrescu R. On the origin of the blue color in the iodine/iodide/starch supramolecular complex. Molecules. 2022;27(24):8974.
9. Parker ML, Ryden P, Wilde PJ, Edwards CH. A simple and effective method for observing starch in whole plant cells and in raw and processed food ingredients. Starch - Stärke. 2021;73(3-4):2000110.
10. Chen Z, Zhong H, Chen M, Gong F, Li J. The fine structure of starch: A review. npj Science of Food. 2025;9(1):50.
11. Kasim A, Permata DA, Mutiar S. Perubahan kimia fisika dan ukuran granula pati tape ubikayu pasca fermentasi. Jurnal Teknologi Pertanian Andalas. 2024;28(2):151-61.
12. Santoso B, Sarungallo ZL, Puspita AM. Physicochemical and functional properties of spineless, short-spines, and long-spines sago starch. Biodiversitas. 2021;22(1):137-43.
13. Zailani MA, Kamilah H, Husaini A, Sarbini SR. Physicochemical properties of microwave heated sago (Metroxylon sagu) starch. CyTA – Journal of Food. 2021;19(1):596-605.
14. Suriya M, Jantanasakulwong K, Leksawasdi N, Seesuriyachan P, Chaiyaso T, Techapun C, et al. The effect of dual-modification by heat-moisture treatment and octenylsuccinylation on physicochemical and pasting properties of arrowroot starch. Polymers. 2023;15(15):3215.
15. Torres FG, Troncoso OP, Pisani A, Gatto F, Bardi G. Physicochemical characterization and properties of cassava starch: A review. Polymers. 2025;17(12):1663.
16. Zhou D, Yao W, Guo S, Wang Y, Liu J, Song C, et al. Rapid detection of wheat components in starch products using the Proofman-LMTIA method. Quality Assurance and Safety of Crops & Foods. 2025;17(2):11-20.
17. Wijayanti NRA, Rahmadhia SN. Analisis kadar pati dan impurities tepung tapioka. Jurnal Teknologi Pangan dan Hasil Pertanian. 2021;16(2):45-52.
18. Suri K, Singh J. Modification of starch by novel and traditional ways: Influence on the structure and functional properties. Food & Function. 2023;14(3):1060-82.
19. Miao M, BeMiller JN. Enzymatic approaches for structuring starch to improve functionality. Annual Review of Food Science and Technology. 2023;14:271-95.
20. Šárka E, Sinica A, Smrčková P, Sluková M. Non-traditional starches, their properties, and applications. Foods. 2023;12(20):3794.
21. Thomas DJ, Atwell WA. Starches. Eagan Press Handbook Series. St. Paul: Eagan Press; 1999.
22. Bertoft E. Understanding starch structure: Recent progress. Agronomy. 2017;7(3):56.
23. Alcázar-Alay SC, Meireles MAA. Physicochemical properties, modifications and applications of starches from different botanical sources. Food Science and Technology. 2015;35(2):215-36.
24. BeMiller JN. Starch chemistry and technology. 3rd ed. San Diego: Academic Press; 2009.
25. Ellis RP, Cochrane MP, Dale MF, Duffus CM, Lynn A, Morrison IM, et al. Starch production and industrial uses. Journal of the Science of Food and Agriculture. 1998;77(3):289-311.
